四環素檢測試劑盒

產品型號：

所屬分類：食品安全檢測

產品時間：2025-07-21

簡要描述：四環素快速檢測試劑盒ELISA 方法，在微孔條上預包被偶聯抗原，樣本中的殘留物四環素將和微孔條上預包被的偶聯抗原競爭抗四環素抗體，加入酶標記物后，用 TMB 底物顯色，樣本吸光值與其所含殘留物四環素的含量成負相關，與標準曲線比較即可得出相應殘留物四環素的含量。

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詳細說明：

四環素快速檢測試劑盒說明書

一、原理

本試劑盒采用間接競爭 ELISA 方法，在微孔條上預包被偶聯抗原，樣本中的殘留物四環素將和微孔條上預包被的偶聯抗原競爭抗四環素抗體，加入酶標記物后，用 TMB 底物顯色，樣本吸光值與其所含殘留物四環素的含量成負相關，與標準曲線比較即可得出相應殘留物四環素的含量。

二、試劑盒特性

試劑盒靈敏度： 0.05ppb

u	孵育溫度：	25℃
u	孵育時間：	30min～15min
u	樣本檢測下限

雞肉樣本：
四環素	0.4ppb
二甲按胺四環素	0.4ppb
吡四環素	0.4ppb
金霉素	0.4ppb
脫甲基金霉素	1.2ppb
土霉素	0.8ppb
強力霉素	1ppb
豬肉、蜂蜜樣本：
四環素	0.5ppb
二甲按胺四環素	0.5ppb
吡四環素	0.5ppb
金霉素	0.5ppb
脫甲基金霉素	1.5ppb
土霉素	1ppb
強力霉素	1.2ppb

交叉反應率

四環素 100%

二甲按胺四環素 125%

吡四環素	110%
金霉素	100%
脫甲基金霉素	35%
土霉素	58%
強力霉素	45%

樣本回收率

雞肉、豬肉、蜂蜜 85±20%

三、試劑盒組成

1	微量測試孔	每條 8 孔，一板 12 條

2	標準品濃縮液	1ml	黑色帽
2	（81ppb）	1ml	黑色帽

3	高濃度標準品	1ml	黑色帽
3	（100ppb）	1ml	黑色帽

4	酶標記物	7ml	白色帽

5	抗體工作液	7ml	白色帽

6	底物 A 液	7ml	白色帽

7	底物 B 液	7ml	黑色帽

8	終止液	7ml	黃色帽

9	20X 濃縮洗滌液	15ml	白色帽

10	10X 樣本提取液	50ml*2	透明帽

11	標準品復溶液	15ml*2	藍色帽

四、所用儀器、試劑

具備的儀器：酶標儀、均質器、振蕩器、離心機、刻度移液管、天平（感量 0.01g）、恒溫箱

微量移液器：單道 20～200µl、單道 100～1000µl、

多道 30～300 µl

試劑：甲醇

五、樣本前處理步驟

樣本處理前須知

（a）實驗中必須使用一次性吸頭，吸取不同試劑時要更換吸頭。

（b）實驗之前須檢查各種實驗器具是否干凈，

必要時可對實驗器具進行清潔，以避免污染干擾實				3、在 ELISA 分析中的再現性，很大程度上取決于
驗結果。				洗板的*性，正確的洗板操作是 ELISA 測定
u	樣本前處理需配制：			程序中的要點。
配液 1		樣本提取液 A		4、所有恒溫孵育過程，避免光線照射，用蓋板膜
		用去離子水450ml 與50ml 10X 樣本提取液		蓋住微孔板。
		混勻或按 9：1 的比例按需配制（如 10X		u 操作步驟：
		樣本提取液有結晶，需溶解后在進行稀		1、從 2～8℃冷藏環境中取出所需試劑，室溫（20～
		釋）。		25℃）平衡 30min 以上，注意每種液體試劑使
配液 2		樣本提取液 B		用前均須搖勻。
		取甲醇 50ml 與 450ml 樣本提取液 A 混勻		2、配制標準品
		或按 1：9 的比例按需配制。		標準品 6：50µl 標準品濃縮液（81ppb）用 950µl
配液 3		樣本提取液 C		標準品復溶液稀釋	4.05ppb
		取甲醇 100ml 與 270ml 樣本提取液 A 混勻		標準品 5：600µl 標準品復溶液與 300µl 標準品 6
		或按 10：27 的比例按需配制。		混合	1.35ppb
u	樣本處理：			標準品 4：600µl 標準品復溶液與 300µl 標準品 5
（a）雞肉處理方法				混合	0.45ppb
1、稱取 1±0.05g 均質后的樣本于 50ml 離心管中，				標準品 3：600µl 標準品復溶液與 300µl 標準品 4
	加入 8ml 樣本提取液 A（見配液 1），振蕩 3min，			混合	0.15ppb
	室溫 4000r/min 以上，離心 10min；			標準品 2：600µl 標準品復溶液與 300µl 標準品 3
2、取 50 上清液用于分析				混合	0.05ppb
	樣本稀釋倍數: 8 倍			標準品 1：標準品復溶液	0ppb
（b）豬肉處理方法				3、取出框架及需要數量的微孔，將不用的微孔放
1、稱取 1±0.05g 均質后的樣本于 50ml 離心管中，				入自封袋，保存于 2-8℃。
	加入 10ml 樣本提取液 B（見配液 2），振蕩 3min，			4、配液：將 15ml 濃縮洗滌液（20 倍濃縮）用去
	室溫 4000r/min 以上，離心 10min；			離子水按照 1：19 稀釋（1 份濃縮洗滌液+19 份
2、取 50 µl 上清液用于分析				去離子水），或按所需用量配制洗滌液。
	樣本稀釋倍數: 10 倍			5、編號：將樣本和標準品對應微孔按序編號，每
（c）蜂蜜處理方法				個樣本和標準品做 2 孔平行，并記錄標準孔和
1、稱取 1±0.05g 均質后的樣本于 50ml 離心管中，				樣本孔所在的位置。
	加入10ml 樣本提取液C（見配液3），振蕩3min，			6、加標準品/樣本 50µl/孔到各自的微孔中，然后加
	室溫 4000r/min 以上，離心 10min；			加入酶標記物 50µl/孔再加入抗體工作液 50µl/
2、取 50 µl 上清液用于分析				孔，用蓋板膜封板，輕輕振蕩混勻。25℃環境
	樣本稀釋倍數: 10 倍			中反應 30min。
				7、將孔內液體甩干，用已稀釋的洗滌液 250µl/孔
六、酶標免疫分析程序:
				洗板 4～5 次，每次間隔 15～30 秒，用吸水紙
u	測定前應須知：

1、使用前將需用試劑和板條的溫度回升至室溫			拍干（拍干后未清除的氣泡可用干凈的槍頭刺

（20～25℃）。			破）。
			8、顯色：加入底物 A 液 50µl/孔，再加入底物 B
2、使用之后立即將所有試劑放回 2～8℃。
			液 50µl/孔，輕輕振蕩混勻，25℃環境中避光顯

色 15min。

9、測定：加入終止液 50µl/孔，輕輕振蕩混勻，設定酶標儀于 450nm 處（建議用雙波長 450/630n m 檢測，5min 內讀數），測定每孔 OD 值。

七、結果判定

結果判定有兩種方法，粗略判定可用第 1 種方法，定量判定用第 2 種方法。注意樣本吸光度值與其所含四環素量成負相關。

1、粗略判定：

用樣本的平均吸光度值與標準值比較即可得出其濃度范圍(ng/ml)。假設樣本 1 的吸光度值為 0.3，樣本 2 的吸光度值為 1.0，標準液吸光度值分別是：

0ppb 為 2.243；0.05ppb 為 1.816；0.15ppb 為 1.415； 0.45ppb 為 0.74；1.35ppb 為 0.313；4.05ppb 為 0.155。

則樣本 1 的濃度范圍是 1.35ppb～4.05ppb；樣本 2

的濃度范圍是 0.15ppb～0.45ppb，乘以其對應的稀釋倍數即為樣本中四環素實際濃度。

2、定量分析

（1）百分吸光率的計算，標準品或樣本的百分吸光率等于標準品或樣本的吸光度值的平均值（雙孔）除以*個標準（0 標準）的吸光度值，再乘以 100%，即

百分吸光率（%）＝ ×100%

B₀

B—標準溶液或樣本溶液的平均吸光度值 B₀—0ng/ml 標準溶液的平均吸光度值

（2）標準曲線的繪制與計算以標準品百分吸光率為縱坐標，以四環素標準

品濃度（ng/ml）的半對數為橫坐標，繪制標準曲線圖。將樣本的百分吸光率代入標準曲線中，從標準曲線上讀出樣本所對應的濃度，乘以其對應的稀釋倍數即為樣本中四環素實際濃度。

若利用試劑盒專業分析軟件進行計算，更便于大量樣本的準確、快速分析。

八、注意事項

1、室溫低于 25℃或試劑及標本未回到室溫（20～

25℃）會導致所有標準的 OD 值偏低。

2、在洗板過程中如果出現板孔干燥的情況，則會伴隨著標準曲線不成線性，重復性不好的現象。所以洗板拍干后應立即進行下一步操作。

3、混合要均勻，否則會出現重復性不好的現象。

4、反應終止液為 2M 硫酸，避免接觸皮膚。

5、不要使用過了有效日期的試劑盒；稀釋或攙雜使用會引起靈敏度、OD 值變化；不要交換使用不同批號的盒中試劑。

6、不用的微孔板放進自封袋重新密封；標準物質和無色的發色劑對光敏感，因此要避免直接暴露在光線下。

7、顯色液若有任何顏色表明變質，應當棄之。標準品 1 的吸光度值小于 0.5 時，表示試劑可能變質。

8、該試劑盒理想反應溫度為 25℃，溫度過高或過低將導致檢測吸光度值和靈敏度發生變化。

九、儲藏條件和保質期

1、儲藏條件：試劑盒于 2-8℃保存，不要冷凍。

2、保質期：該產品有效期為 1 年，生產日期見包裝盒。

提示：酶標板真空包裝袋若有漏氣，酶標板仍然正常有效，不影響實驗結果，請放心使用。

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